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Plantas ornamentais com folhagem exuberante são muito valorizadas. Uma maneira de alcançar esse resultado é utilizar reguladores de crescimento vegetal como ferramentas de manejo. Este estudo foi conduzido com Schefflera anã (uma planta ornamental de folhagem) tratada com pulverizações foliares de ácido giberélico e benziladenina em uma estufa equipada com sistema de irrigação por aspersão. O hormônio foi pulverizado nas folhas da Schefflera anã nas concentrações de 0, 100 e 200 mg/L em três etapas, a cada 15 dias. O experimento foi conduzido em delineamento inteiramente casualizado, com quatro repetições, em esquema fatorial. A combinação de ácido giberélico e benziladenina na concentração de 200 mg/L apresentou efeito significativo no número de folhas, área foliar e altura da planta. Este tratamento também resultou no maior teor de pigmentos fotossintéticos. Além disso, as maiores proporções de carboidratos solúveis e açúcares redutores foram observadas nos tratamentos com 100 e 200 mg/L de benziladenina e com 200 mg/L de giberelina + benziladenina. A análise de regressão stepwise mostrou que o volume radicular foi a primeira variável a entrar no modelo, explicando 44% da variação. A variável seguinte foi a massa fresca da raiz, com o modelo bivariado explicando 63% da variação no número de folhas. O maior efeito positivo sobre o número de folhas foi exercido pela massa fresca da raiz (0,43), que apresentou correlação positiva com o número de folhas (0,47). Os resultados mostraram que o ácido giberélico e a benziladenina, na concentração de 200 mg/L, melhoraram significativamente o crescimento morfológico, a síntese de clorofila e carotenoides de Liriodendron tulipifera e reduziram o teor de açúcares e carboidratos solúveis.
A Schefflera arborescens (Hayata) Merr é uma planta ornamental perene da família Araliaceae, nativa da China e de Taiwan¹. Esta planta é frequentemente cultivada como planta de interior, mas apenas uma planta consegue crescer nessas condições. As folhas possuem de 5 a 16 folíolos, cada um com 10-20 cm² de comprimento. A Schefflera anã é vendida em grandes quantidades todos os anos, mas os métodos modernos de jardinagem raramente são utilizados. Portanto, o uso de reguladores de crescimento vegetal como ferramentas eficazes de manejo para melhorar o crescimento e a produção sustentável de produtos hortícolas requer mais atenção. Atualmente, o uso de reguladores de crescimento vegetal aumentou significativamente³,⁴,⁵. O ácido giberélico é um regulador de crescimento vegetal que pode aumentar a produtividade das plantas⁶. Um de seus efeitos conhecidos é a estimulação do crescimento vegetativo, incluindo o alongamento do caule e da raiz e o aumento da área foliar⁷. O efeito mais significativo das giberelinas é o aumento da altura do caule devido ao alongamento dos entrenós. A pulverização foliar de giberelinas em plantas anãs que não conseguem produzir giberelinas resulta em aumento do alongamento do caule e da altura da planta8. A pulverização foliar de flores e folhas com ácido giberélico a uma concentração de 500 mg/l pode aumentar a altura da planta, o número, a largura e o comprimento das folhas9. Há relatos de que as giberelinas estimulam o crescimento de várias plantas de folhas largas10. O alongamento do caule foi observado em pinheiro-silvestre (Pinus sylvestris) e abeto-branco (Picea glauca) quando as folhas foram pulverizadas com ácido giberélico11.
Um estudo examinou os efeitos de três reguladores de crescimento vegetal citocinínicos na formação de ramos laterais em lírio-da-paz (Lily officinalis). Experimentos foram conduzidos no outono e na primavera para estudar os efeitos sazonais. Os resultados mostraram que a cinetina, a benziladenina e a 2-preniladenina não afetaram a formação de ramos adicionais. No entanto, 500 ppm de benziladenina resultaram na formação de 12,2 e 8,2 ramos subsidiários nos experimentos de outono e primavera, respectivamente, em comparação com 4,9 e 3,9 ramos nas plantas controle. Estudos têm demonstrado que tratamentos de verão são mais eficazes do que os de inverno. Em outro experimento, plantas de lírio-da-paz var. Tassone foram tratadas com 0, 250 e 500 ppm de benziladenina em vasos de 10 cm de diâmetro. Os resultados mostraram que o tratamento do solo aumentou significativamente o número de folhas adicionais em comparação com as plantas controle e as plantas tratadas com benziladenina. Novas folhas adicionais foram observadas quatro semanas após o tratamento, e a produção máxima de folhas foi observada oito semanas após o tratamento. Vinte semanas após o tratamento, as plantas tratadas no solo apresentaram menor ganho de altura do que as plantas pré-tratadas¹³. Foi relatado que a benziladenina, na concentração de 20 mg/L, pode aumentar significativamente a altura e o número de folhas em Croton¹⁴. Em copos-de-leite, a benziladenina, na concentração de 500 ppm, resultou em um aumento no número de ramos, enquanto o número de ramos foi menor no grupo controle¹⁵. O objetivo deste estudo foi investigar a aplicação foliar de ácido giberélico e benziladenina para melhorar o crescimento de Schefflera dwarfa, uma planta ornamental de folhagem. Esses reguladores de crescimento vegetal podem auxiliar os produtores comerciais no planejamento da produção adequada ao longo do ano. Não foram encontrados estudos para melhorar o crescimento de Liriodendron tulipifera.
Este estudo foi conduzido na estufa de pesquisa de plantas de interior da Universidade Islâmica Azad em Jiloft, Irã. Mudas uniformes de Schefflera anã com altura de 25±5 cm foram preparadas (propagadas seis meses antes do experimento) e semeadas em vasos. O vaso era de plástico preto, com 20 cm de diâmetro e 30 cm de altura.
O meio de cultura neste estudo foi uma mistura de turfa, húmus, areia lavada e casca de arroz na proporção de 1:1:1:1 (em volume)¹⁶. Coloque uma camada de pedras no fundo do vaso para drenagem. As temperaturas médias diurnas e noturnas na estufa, no final da primavera e no verão, foram de 32 ± 2 °C e 28 ± 2 °C, respectivamente. A umidade relativa variou acima de 70%. Utilize um sistema de nebulização para irrigação. Em média, as plantas foram regadas 12 vezes ao dia. No outono e no verão, cada rega durou 8 minutos e o intervalo entre as regas foi de 1 hora. As plantas foram cultivadas de forma semelhante quatro vezes, 2, 4, 6 e 8 semanas após a semeadura, com uma solução de micronutrientes (Ghoncheh Co., Irã) na concentração de 3 ppm e irrigadas com 100 ml da solução a cada vez. A solução nutritiva contém 8 ppm de N, 4 ppm de P, 5 ppm de K e os oligoelementos Fe, Pb, Zn, Mn, Mo e B.
Três concentrações de ácido giberélico e do regulador de crescimento vegetal benziladenina (adquirido da Sigma) foram preparadas a 0, 100 e 200 mg/L e pulverizadas nos botões florais das plantas em três etapas, com intervalo de 15 dias. O Tween 20 (0,1%) (adquirido da Sigma) foi adicionado à solução para aumentar sua longevidade e taxa de absorção. No início da manhã, os hormônios foram pulverizados nos botões florais e folhas de Liriodendron tulipifera utilizando um pulverizador. As plantas foram pulverizadas com água destilada.
A altura da planta, o diâmetro do caule, a área foliar, o teor de clorofila, o número de entrenós, o comprimento dos ramos secundários, o número de ramos secundários, o volume da raiz, o comprimento da raiz, a massa da folha, da raiz, do caule e a matéria fresca seca, o teor de pigmentos fotossintéticos (clorofila a, clorofila b), clorofila total, carotenoides, pigmentos totais), açúcares redutores e carboidratos solúveis foram medidos em diferentes tratamentos.
O teor de clorofila das folhas jovens foi medido 180 dias após a pulverização, utilizando um clorofilômetro (Spad CL-01) entre 9h30 e 10h (devido à frescura das folhas). Adicionalmente, a área foliar foi medida 180 dias após a pulverização. Três folhas de cada vaso foram pesadas: uma da extremidade superior, uma da extremidade mediana e uma da extremidade inferior do caule. Essas folhas foram então utilizadas como moldes em papel A4, e o padrão resultante foi recortado. O peso e a área da superfície de uma folha de papel A4 também foram medidos. Em seguida, a área das folhas recortadas foi calculada utilizando as proporções. Além disso, o volume da raiz foi determinado utilizando uma proveta. O peso seco das folhas, o peso seco do caule, o peso seco da raiz e o peso seco total de cada amostra foram medidos após secagem em estufa a 72 °C por 48 horas.
O teor de clorofila e carotenoides foi determinado pelo método de Lichtenthaler¹⁸. Para isso, 0,1 g de folhas frescas foi triturada em um almofariz de porcelana contendo 15 ml de acetona a 80% e, após filtração, sua densidade óptica foi medida utilizando um espectrofotômetro nos comprimentos de onda de 663,2, 646,8 e 470 nm. Calibre o aparelho utilizando acetona a 80%. Calcule a concentração de pigmentos fotossintéticos utilizando a seguinte equação:
Dentre eles, Chl a, Chl b, Chl T e Car representam clorofila a, clorofila b, clorofila total e carotenoides, respectivamente. Os resultados são apresentados em mg/ml de planta.
Os açúcares redutores foram medidos utilizando o método de Somogy¹⁹. Para isso, 0,02 g de brotos de plantas são triturados em um almofariz de porcelana com 10 ml de água destilada e o conteúdo é transferido para um pequeno recipiente de vidro. O conteúdo do recipiente é aquecido até a fervura e filtrado utilizando papel de filtro Whatman nº 1 para obter um extrato vegetal. 2 ml de cada extrato são transferidos para um tubo de ensaio e adicionam-se 2 ml de solução de sulfato de cobre. O tubo de ensaio é coberto com algodão e aquecido em banho-maria a 100 °C por 20 minutos. Nessa etapa, o Cu²⁺ é convertido em Cu₂O pela redução de monossacarídeos aldeídicos, e uma coloração salmão (cor de terracota) torna-se visível no fundo do tubo de ensaio. Após o resfriamento do tubo de ensaio, adicionam-se 2 ml de ácido fosfomolíbdico, o que resulta no aparecimento de uma coloração azul. O tubo é agitado vigorosamente até que a cor se distribua uniformemente. A absorbância da solução é medida a 600 nm utilizando um espectrofotômetro.
Calcule a concentração de açúcares redutores utilizando a curva padrão. A concentração de carboidratos solúveis foi determinada pelo método de Fales20. Para isso, 0,1 g de brotos foi misturado com 2,5 ml de etanol a 80% a 90 °C por 60 min (duas etapas de 30 min cada) para extrair os carboidratos solúveis. O extrato foi então filtrado e o álcool evaporado. O precipitado resultante foi dissolvido em 2,5 ml de água destilada. 200 ml de cada amostra foram transferidos para um tubo de ensaio e adicionados 5 ml de indicador de antrona. A mistura foi colocada em banho-maria a 90 °C por 17 min e, após o resfriamento, sua absorbância foi determinada a 625 nm.
O experimento foi um experimento fatorial baseado em um delineamento inteiramente casualizado com quatro repetições. O procedimento PROC UNIVARIATE foi utilizado para verificar a normalidade da distribuição dos dados antes da análise de variância. A análise estatística iniciou-se com uma análise descritiva para compreender a qualidade dos dados brutos coletados. Os cálculos foram elaborados para simplificar e condensar grandes conjuntos de dados, facilitando sua interpretação. Análises mais complexas foram realizadas posteriormente. O teste de Duncan foi realizado utilizando o software SPSS (versão 24; IBM Corporation, Armonk, NY, EUA) para calcular os quadrados médios e os erros experimentais, a fim de determinar as diferenças entre os conjuntos de dados. O teste de Duncan para comparações múltiplas (DMRT) foi utilizado para identificar diferenças entre as médias com um nível de significância de (0,05 ≤ p). O coeficiente de correlação de Pearson (r) foi calculado utilizando o software SPSS (versão 26; IBM Corp., Armonk, NY, EUA) para avaliar a correlação entre diferentes pares de parâmetros. Além disso, foi realizada uma análise de regressão linear utilizando o software SPSS (v.26) para predizer os valores das variáveis do primeiro ano com base nos valores das variáveis do segundo ano. Por outro lado, foi realizada uma análise de regressão stepwise com p < 0,01 para identificar as características que influenciam criticamente as folhas da schefflera anã. A análise de caminhos foi conduzida para determinar os efeitos diretos e indiretos de cada atributo no modelo (com base nas características que melhor explicam a variação). Todos os cálculos acima (normalidade da distribuição dos dados, coeficiente de correlação simples, regressão stepwise e análise de caminhos) foram realizados utilizando o software SPSS versão 26.
As amostras de plantas cultivadas selecionadas estavam de acordo com as diretrizes institucionais, nacionais e internacionais relevantes, bem como com a legislação interna do Irã.
A Tabela 1 apresenta as estatísticas descritivas de média, desvio padrão, mínimo, máximo, amplitude e coeficiente de variação fenotípica (CV) para diversas características. Dentre essas estatísticas, o CV permite a comparação de atributos por ser adimensional. Os açúcares redutores (40,39%), a massa seca da raiz (37,32%), a massa fresca da raiz (37,30%), a relação açúcar/açúcar (30,20%) e o volume da raiz (30%) apresentaram os valores mais altos. O teor de clorofila (9,88%) e a área foliar apresentaram o maior índice (11,77%) e o menor valor de CV. A Tabela 1 mostra que a massa úmida total apresentou a maior amplitude. No entanto, essa característica não apresentou o maior CV. Portanto, métricas adimensionais como o CV devem ser utilizadas para comparar as mudanças nos atributos. Um CV alto indica uma grande diferença entre os tratamentos para essa característica. Os resultados deste experimento mostraram grandes diferenças entre os tratamentos com baixo teor de açúcar nas características de massa seca da raiz, massa fresca da raiz, relação carboidrato/açúcar e volume da raiz.
Os resultados da análise de variância mostraram que, em comparação com o controle, a pulverização foliar com ácido giberélico e benziladenina teve um efeito significativo na altura da planta, número de folhas, área foliar, volume radicular, comprimento radicular, índice de clorofila, peso fresco e peso seco.
A comparação dos valores médios mostrou que os reguladores de crescimento vegetal tiveram um efeito significativo na altura da planta e no número de folhas. Os tratamentos mais eficazes foram o ácido giberélico na concentração de 200 mg/l e o ácido giberélico + benziladenina na concentração de 200 mg/l. Comparado ao controle, a altura da planta e o número de folhas aumentaram 32,92 vezes e 62,76 vezes, respectivamente (Tabela 2).
A área foliar aumentou significativamente em todas as variantes em comparação com o controle, com o aumento máximo observado em 200 mg/l para o ácido giberélico, atingindo 89,19 cm². Os resultados mostraram que a área foliar aumentou significativamente com o aumento da concentração do regulador de crescimento (Tabela 2).
Todos os tratamentos aumentaram significativamente o volume e o comprimento da raiz em comparação com o controle. A combinação de ácido giberélico + benziladenina teve o maior efeito, aumentando o volume e o comprimento da raiz em metade em comparação com o controle (Tabela 2).
Os maiores valores de diâmetro do caule e comprimento do entrenó foram observados nos tratamentos controle e ácido giberélico + benziladenina 200 mg/l, respectivamente.
O índice de clorofila aumentou em todas as variantes em comparação com o controle. O maior valor dessa característica foi observado quando tratado com ácido giberélico + benziladenina 200 mg/l, que foi 30,21% maior que o controle (Tabela 2).
Os resultados mostraram que o tratamento resultou em diferenças significativas no teor de pigmentos, redução de açúcares e carboidratos solúveis.
O tratamento com ácido giberélico + benziladenina resultou no teor máximo de pigmentos fotossintéticos. Esse teor foi significativamente maior em todas as variantes do que no controle.
Os resultados mostraram que todos os tratamentos foram capazes de aumentar o teor de clorofila da Schefflera anã. No entanto, o maior valor dessa característica foi observado no tratamento com ácido giberélico + benziladenina, que foi 36,95% superior ao controle (Tabela 3).
Os resultados para a clorofila b foram completamente semelhantes aos resultados para a clorofila a, a única diferença foi o aumento no teor de clorofila b, que foi 67,15% maior do que o controle (Tabela 3).
O tratamento resultou em um aumento significativo na clorofila total em comparação com o controle. O tratamento com ácido giberélico 200 mg/l + benziladenina 100 mg/l levou ao maior valor dessa característica, que foi 50% superior ao do controle (Tabela 3). De acordo com os resultados, o controle e o tratamento com benziladenina na dose de 100 mg/l apresentaram os maiores valores para essa característica. Liriodendron tulipifera apresentou o maior valor de carotenoides (Tabela 3).
Os resultados mostraram que, quando tratada com ácido giberélico na concentração de 200 mg/L, o teor de clorofila a aumentou significativamente para clorofila b (Fig. 1).
Efeito do ácido giberélico e da benziladenina nas proporções de clorofila a/b da schefflera anã. (GA3: ácido giberélico e BA: benziladenina). Letras iguais em cada figura indicam ausência de diferença significativa (P < 0,01).
O efeito de cada tratamento sobre a massa fresca e seca da madeira de schefflera anã foi significativamente maior do que o do controle. O tratamento com ácido giberélico + benziladenina na dose de 200 mg/L foi o mais eficaz, aumentando a massa fresca em 138,45% em comparação com o controle. Em comparação com o controle, todos os tratamentos, exceto o de 100 mg/L de benziladenina, aumentaram significativamente a massa seca da planta, sendo que a combinação de 200 mg/L de ácido giberélico + benziladenina resultou no maior valor para essa característica (Tabela 4).
A maioria das variantes diferiu significativamente do controle nesse aspecto, com os valores mais altos pertencendo a 100 e 200 mg/l de benziladenina e 200 mg/l de ácido giberélico + benziladenina (Fig. 2).
Influência do ácido giberélico e da benziladenina na proporção de carboidratos solúveis e açúcares redutores em schefflera anã. (GA3: ácido giberélico e BA: benziladenina). Letras iguais em cada figura indicam ausência de diferença significativa (P < 0,01).
Foi realizada uma análise de regressão stepwise para determinar os atributos reais e compreender melhor a relação entre as variáveis independentes e o número de folhas em Liriodendron tulipifera. O volume da raiz foi a primeira variável inserida no modelo, explicando 44% da variação. A variável seguinte foi a massa fresca da raiz, e essas duas variáveis explicaram 63% da variação no número de folhas (Tabela 5).
A análise de caminhos foi realizada para melhor interpretar a regressão stepwise (Tabela 6 e Figura 3). O maior efeito positivo no número de folhas foi associado à massa fresca da raiz (0,43), que apresentou correlação positiva com o número de folhas (0,47). Isso indica que essa característica afeta diretamente a produtividade, enquanto seu efeito indireto por meio de outras características é negligenciável, e que essa característica pode ser utilizada como critério de seleção em programas de melhoramento genético para schefflera anã. O efeito direto do volume da raiz foi negativo (−0,67). A influência dessa característica no número de folhas é direta, enquanto a influência indireta é insignificante. Isso indica que quanto maior o volume da raiz, menor o número de folhas.
A Figura 4 mostra as alterações na regressão linear do volume radicular e dos açúcares redutores. De acordo com o coeficiente de regressão, cada unidade de variação no comprimento da raiz e nos carboidratos solúveis corresponde a uma variação de 0,6019 unidades no volume radicular e de 0,311 unidades nos açúcares redutores.
O coeficiente de correlação de Pearson das características de crescimento é mostrado na Figura 5. Os resultados mostraram que o número de folhas e a altura da planta (0,379*) apresentaram a maior correlação positiva e significativa.
Mapa de calor das relações entre variáveis nos coeficientes de correlação da taxa de crescimento. # Eixo Y: 1-Índice Ch., 2-Entrónodo, 3-IAF, 4-Número de folhas, 5-Altura das pernas, 6-Diâmetro do caule. # Ao longo do eixo X: A – Índice H, B – distância entre nós, C – IAF, D – Número de folhas, E – altura das pernas, F – diâmetro do caule.
O coeficiente de correlação de Pearson para os atributos relacionados ao peso úmido é mostrado na Figura 6. Os resultados mostram a relação entre o peso úmido da folha e o peso seco da parte aérea (0,834**), o peso seco total (0,913**) e o peso seco da raiz (0,562*). A massa seca total apresenta a correlação positiva mais alta e significativa com a massa seca da parte aérea (0,790**) e a massa seca da raiz (0,741**).
Mapa de calor das relações entre as variáveis do coeficiente de correlação do peso fresco. # Eixo Y: 1 – peso das folhas frescas, 2 – peso dos brotos frescos, 3 – peso das raízes frescas, 4 – peso total das folhas frescas. # Eixo X: A – peso das folhas frescas, B – peso dos brotos frescos, CW – peso das raízes frescas, D – peso fresco total.
Os coeficientes de correlação de Pearson para os atributos relacionados ao peso seco são mostrados na Figura 7. Os resultados mostram que o peso seco da folha, o peso seco do botão (0,848**) e o peso seco total (0,947**), bem como o peso seco do botão (0,854**) e a massa seca total (0,781**), apresentam os valores mais altos de correlação positiva e significativa.
Mapa de calor das relações entre as variáveis do coeficiente de correlação do peso seco. # O eixo Y representa: 1 - peso seco da folha, 2 - peso seco da gema, 3 - peso seco da raiz, 4 - peso seco total. # Eixo X: A - peso seco da folha, B - peso seco da gema, C - peso seco da raiz, D - peso seco total.
O coeficiente de correlação de Pearson das propriedades dos pigmentos é mostrado na Figura 8. Os resultados mostram que a clorofila a e a clorofila b (0,716**), a clorofila total (0,968**) e os pigmentos totais (0,954**); a clorofila b e a clorofila total (0,868**) e os pigmentos totais (0,851**); a clorofila total tem a correlação positiva e significativa mais alta com os pigmentos totais (0,984**).
Mapa de calor das relações entre as variáveis do coeficiente de correlação da clorofila. # Eixo Y: 1 - Canal a, 2 - Canal b, 3 - Razão a/b, 4 - Total, 5 - Carotenoides, 6 - Rendimento de pigmentos. # Eixo X: A - Clorofila a, B - Clorofila b, C - Razão a/b, D - Conteúdo total de clorofila, E - Carotenoides, F - Rendimento de pigmentos.
A Schefflera anã é uma planta ornamental popular em todo o mundo, e seu crescimento e desenvolvimento têm recebido muita atenção atualmente. O uso de reguladores de crescimento vegetal resultou em diferenças significativas, com todos os tratamentos aumentando a altura das plantas em comparação com o controle. Embora a altura das plantas seja geralmente controlada geneticamente, pesquisas mostram que a aplicação de reguladores de crescimento vegetal pode aumentá-la ou diminuí-la. A altura e o número de folhas das plantas tratadas com ácido giberélico + benziladenina 200 mg/L foram os maiores, atingindo 109 cm e 38,25, respectivamente. De acordo com estudos anteriores (SalehiSardoei et al.52) e Spathiphyllum23, aumentos semelhantes na altura das plantas devido ao tratamento com ácido giberélico foram observados em calêndulas em vasos, Albus alba21, lírios-de-um-dia22, lírios-de-um-dia, agarwood e lírios-da-paz.
O ácido giberélico (AG) desempenha um papel importante em vários processos fisiológicos das plantas. Ele estimula a divisão celular, o alongamento celular, o alongamento do caule e o aumento de tamanho24. O AG induz a divisão e o alongamento celular nos ápices caulinares e meristemas25. As alterações foliares também incluem diminuição da espessura do caule, menor tamanho das folhas e uma coloração verde mais intensa26. Estudos utilizando fatores inibitórios ou estimulatórios demonstraram que os íons de cálcio de fontes internas atuam como segundos mensageiros na via de sinalização da giberelina na corola do sorgo27. O ácido hialurônico (AH) aumenta o comprimento da planta estimulando a síntese de enzimas que causam o relaxamento da parede celular, como XET ou XTH, expansinas e PME28. Isso faz com que as células aumentem de tamanho à medida que a parede celular relaxa e a água entra na célula29. A aplicação de AG7, AG3 e AG4 pode aumentar o alongamento do caule30,31. O ácido giberélico causa alongamento do caule em plantas anãs e, em plantas em roseta, o AG retarda o crescimento foliar e o alongamento dos entrenós32. Entretanto, antes da fase reprodutiva, o comprimento do caule aumenta de 4 a 5 vezes a sua altura original33. O processo de biossíntese de GA nas plantas está resumido na Figura 9.
Biossíntese de GA em plantas e níveis de GA bioativo endógeno, representação esquemática de plantas (à direita) e biossíntese de GA (à esquerda). As setas são codificadas por cores para corresponder à forma de HA indicada ao longo da via biossintética; setas vermelhas indicam níveis reduzidos de GC devido à localização em órgãos da planta, e setas pretas indicam níveis aumentados de GC. Em muitas plantas, como arroz e melancia, o teor de GA é maior na base ou na parte inferior da folha30. Além disso, alguns relatos indicam que o teor de GA bioativo diminui à medida que as folhas se alongam a partir da base34. Os níveis exatos de giberelinas nesses casos são desconhecidos.
Os reguladores de crescimento vegetal também influenciam significativamente o número e a área das folhas. Os resultados mostraram que o aumento da concentração do regulador de crescimento vegetal resultou em um aumento significativo na área e no número de folhas. A benziladenina tem sido relatada como um fator que aumenta a produção de folhas de cala (ou copo-de-leite)¹⁵. De acordo com os resultados deste estudo, todos os tratamentos melhoraram a área e o número de folhas. O tratamento com ácido giberélico + benziladenina foi o mais eficaz, resultando no maior número e área de folhas. Ao cultivar schefflera anã em ambientes internos, pode haver um aumento notável no número de folhas.
O tratamento com GA3 aumentou o comprimento dos entrenós em comparação com a benziladenina (BA) ou com a ausência de tratamento hormonal. Esse resultado é lógico, considerando o papel do GA na promoção do crescimento7. O crescimento do caule também apresentou resultados semelhantes. O ácido giberélico aumentou o comprimento do caule, mas diminuiu seu diâmetro. No entanto, a aplicação combinada de BA e GA3 aumentou significativamente o comprimento do caule. Esse aumento foi maior em comparação com as plantas tratadas com BA ou sem o hormônio. Embora o ácido giberélico e as citocininas (CK) geralmente promovam o crescimento das plantas, em alguns casos eles têm efeitos opostos em diferentes processos35. Por exemplo, observou-se uma interação negativa no aumento do comprimento do hipocótilo em plantas tratadas com GA e BA36. Por outro lado, a BA aumentou significativamente o volume radicular (Tabela 1). O aumento do volume radicular devido à BA exógena tem sido relatado em muitas plantas (por exemplo, espécies de Dendrobium e orquídeas)37,38.
Todos os tratamentos hormonais aumentaram o número de novas folhas. O aumento natural da área foliar e do comprimento do caule por meio de tratamentos combinados é comercialmente desejável. O número de novas folhas é um importante indicador de crescimento vegetativo. O uso de hormônios exógenos não tem sido empregado na produção comercial de Liriodendron tulipifera. No entanto, os efeitos promotores de crescimento do GA e do CK, aplicados em equilíbrio, podem fornecer novas perspectivas para o aprimoramento do cultivo desta planta. Notavelmente, o efeito sinérgico do tratamento BA + GA3 foi superior ao do GA ou BA administrados isoladamente. O ácido giberélico aumenta o número de novas folhas. À medida que novas folhas se desenvolvem, o aumento do número de novas folhas pode limitar o crescimento foliar39. Há relatos de que o GA melhora o transporte de sacarose dos órgãos de reserva para os órgãos de produção40,41. Além disso, a aplicação exógena de GA em plantas perenes pode promover o crescimento de órgãos vegetativos, como folhas e raízes, prevenindo assim a transição do crescimento vegetativo para o reprodutivo42.
O efeito do GA no aumento da matéria seca vegetal pode ser explicado pelo aumento da fotossíntese devido ao aumento da área foliar43. Foi relatado que o GA causa um aumento na área foliar do milho34. Os resultados mostraram que o aumento da concentração de BA para 200 mg/L pode aumentar o comprimento e o número de ramos secundários e o volume radicular. O ácido giberélico influencia processos celulares como o estímulo à divisão e ao alongamento celular, melhorando assim o crescimento vegetativo43. Além disso, o HA expande a parede celular por meio da hidrólise do amido em açúcar, reduzindo assim o potencial hídrico da célula, permitindo a entrada de água na célula e, consequentemente, levando ao alongamento celular44.
Data da publicação: 08/05/2024