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Plantas de folhagem decorativa com aparência exuberante são muito valorizadas. Uma maneira de conseguir isso é usarreguladores de crescimento de plantascomo ferramentas de manejo do crescimento das plantas. O estudo foi conduzido em Schefflera anã (uma planta de folhagem ornamental) tratada com pulverizações foliares deácido giberélicoe hormônio benziladenina em uma estufa equipada com um sistema de irrigação por nebulização. O hormônio foi pulverizado nas folhas de Schefflera anã nas concentrações de 0, 100 e 200 mg/l em três estágios a cada 15 dias. O experimento foi conduzido em base fatorial em um delineamento inteiramente casualizado com quatro repetições. A combinação de ácido giberélico e benziladenina na concentração de 200 mg/l teve um efeito significativo no número de folhas, área foliar e altura da planta. Este tratamento também resultou no maior conteúdo de pigmentos fotossintéticos. Além disso, as maiores proporções de carboidratos solúveis e açúcares redutores foram observadas com benziladenina a 100 e 200 mg/L e ácido giberélico + benziladenina a 200 mg/L. A análise de regressão stepwise mostrou que o volume da raiz foi a primeira variável a entrar no modelo, explicando 44% da variação. A próxima variável foi a massa fresca de raízes, com o modelo bivariado explicando 63% da variação no número de folhas. O maior efeito positivo sobre o número de folhas foi exercido pela massa fresca de raízes (0,43), que se correlacionou positivamente com o número de folhas (0,47). Os resultados mostraram que o ácido giberélico e a benziladenina na concentração de 200 mg/l melhoraram significativamente o crescimento morfológico, a síntese de clorofila e carotenoides de Liriodendron tulipifera e reduziram o teor de açúcares e carboidratos solúveis.
Schefflera arborescens (Hayata) Merr é uma planta ornamental perene da família Araliaceae, nativa da China e Taiwan1. Esta planta é frequentemente cultivada como planta de casa, mas apenas uma planta pode crescer nessas condições. As folhas têm de 5 a 16 folíolos, cada um com 10-20 cm2 de comprimento. A Schefflera anã é vendida em grandes quantidades todos os anos, mas métodos modernos de jardinagem raramente são usados. Portanto, o uso de reguladores de crescimento de plantas como ferramentas eficazes de manejo para melhorar o crescimento e a produção sustentável de produtos hortícolas requer mais atenção. Hoje, o uso de reguladores de crescimento de plantas aumentou significativamente3,4,5. O ácido giberélico é um regulador de crescimento de plantas que pode aumentar a produtividade das plantas6. Um de seus efeitos conhecidos é a estimulação do crescimento vegetativo, incluindo alongamento do caule e da raiz e aumento da área foliar7. O efeito mais significativo das giberelinas é o aumento da altura do caule devido ao alongamento dos entrenós. A pulverização foliar de giberelinas em plantas anãs incapazes de produzi-las resulta em aumento do alongamento do caule e da altura da planta8. A pulverização foliar de flores e folhas com ácido giberélico na concentração de 500 mg/l pode aumentar a altura da planta, o número, a largura e o comprimento das folhas9. Foi relatado que as giberelinas estimulam o crescimento de diversas plantas de folhas largas10. O alongamento do caule foi observado em pinheiro-silvestre (Pinussylvestris) e abeto-branco (Piceaglauca) quando as folhas foram pulverizadas com ácido giberélico11.
Um estudo examinou os efeitos de três reguladores de crescimento de plantas de citocinina na formação de ramos laterais em Lily officinalis. bend Os experimentos foram conduzidos no outono e na primavera para estudar os efeitos sazonais. Os resultados mostraram que a cinetina, a benziladenina e a 2-preniladenina não afetaram a formação de ramos adicionais. No entanto, 500 ppm de benziladenina resultaram na formação de 12,2 e 8,2 ramos subsidiários nos experimentos de outono e primavera, respectivamente, em comparação com 4,9 e 3,9 ramos nas plantas de controle. Estudos mostraram que os tratamentos de verão são mais eficazes do que os de inverno12. Em outro experimento, as plantas Peace Lily var. Tassone foram tratadas com 0, 250 e 500 ppm de benziladenina em vasos de 10 cm de diâmetro. Os resultados mostraram que o tratamento do solo aumentou significativamente o número de folhas adicionais em comparação com as plantas de controle e tratadas com benziladenina. Novas folhas adicionais foram observadas quatro semanas após o tratamento, e a produção máxima de folhas foi observada oito semanas após o tratamento. Em 20 semanas após o tratamento, as plantas tratadas com solo apresentaram menor ganho de altura do que as plantas pré-tratadas13. Foi relatado que a benziladenina na concentração de 20 mg/L pode aumentar significativamente a altura da planta e o número de folhas em Croton 14. Em copos-de-leite, a benziladenina na concentração de 500 ppm resultou em um aumento no número de ramos, enquanto o número de ramos foi menor no grupo controle15. O objetivo deste estudo foi investigar a pulverização foliar de ácido giberélico e benziladenina para melhorar o crescimento de Schefflera dwarfa, uma planta ornamental. Esses reguladores de crescimento vegetal podem ajudar os produtores comerciais a planejar a produção adequada durante todo o ano. Nenhum estudo foi conduzido para melhorar o crescimento de Liriodendron tulipifera.
Este estudo foi conduzido na estufa de pesquisa de plantas internas da Universidade Islâmica Azad em Jiloft, Irã. Mudas uniformes de raízes de Schefflera anã com 25 ± 5 cm de altura foram preparadas (propagadas seis meses antes do experimento) e semeadas em vasos. O vaso é de plástico, preto, com 20 cm de diâmetro e 30 cm de altura.
O meio de cultura neste estudo foi uma mistura de turfa, húmus, areia lavada e casca de arroz na proporção de 1:1:1:1 (por volume)16. Coloque uma camada de seixos no fundo do vaso para drenagem. As temperaturas médias diurnas e noturnas na estufa no final da primavera e no verão foram de 32 ± 2 °C e 28 ± 2 °C, respectivamente. A umidade relativa varia para > 70%. Use um sistema de nebulização para irrigação. Em média, as plantas são regadas 12 vezes ao dia. No outono e no verão, o tempo de cada rega é de 8 minutos, o intervalo de rega é de 1 hora. As plantas foram cultivadas de forma semelhante quatro vezes, 2, 4, 6 e 8 semanas após a semeadura, com uma solução de micronutrientes (Ghoncheh Co., Irã) a uma concentração de 3 ppm e irrigadas com 100 ml de solução a cada vez. A solução nutritiva contém N 8 ppm, P 4 ppm, K 5 ppm e oligoelementos Fe, Pb, Zn, Mn, Mo e B.
Três concentrações de ácido giberélico e do regulador de crescimento vegetal benziladenina (adquirido da Sigma) foram preparadas a 0, 100 e 200 mg/L e pulverizadas sobre os brotos das plantas em três etapas, com intervalo de 15 dias17. Tween 20 (0,1%) (adquirido da Sigma) foi utilizado na solução para aumentar sua longevidade e taxa de absorção. No início da manhã, os hormônios foram pulverizados sobre os brotos e folhas de Liriodendron tulipifera com um pulverizador. As plantas foram pulverizadas com água destilada.
Altura da planta, diâmetro do caule, área foliar, teor de clorofila, número de internódios, comprimento dos ramos secundários, número de ramos secundários, volume da raiz, comprimento da raiz, massa da folha, raiz, caule e matéria fresca seca, teor de pigmentos fotossintéticos (clorofila a, clorofila b) Clorofila total, carotenoides, pigmentos totais, açúcares redutores e carboidratos solúveis foram medidos em diferentes tratamentos.
O teor de clorofila das folhas jovens foi medido 180 dias após a pulverização usando um medidor de clorofila (Spad CL-01) das 9h30 às 10h (devido ao frescor das folhas). Além disso, a área foliar foi medida 180 dias após a pulverização. Pesaram-se três folhas da parte superior, central e inferior do caule de cada vaso. Essas folhas foram então usadas como moldes em papel A4 e o padrão resultante foi recortado. O peso e a área de superfície de uma folha de papel A4 também foram medidos. Em seguida, a área das folhas estêncil foi calculada usando as proporções. Além disso, o volume da raiz foi determinado usando um cilindro graduado. O peso seco da folha, o peso seco do caule, o peso seco da raiz e o peso seco total de cada amostra foram medidos por secagem em estufa a 72 °C por 48 horas.
O teor de clorofila e carotenoides foi medido pelo método de Lichtenthaler18. Para isso, 0,1 g de folhas frescas foram moídas em um almofariz de porcelana contendo 15 ml de acetona a 80% e, após filtração, sua densidade óptica foi medida em um espectrofotômetro nos comprimentos de onda de 663,2, 646,8 e 470 nm. Calibre o dispositivo usando acetona a 80%. Calcule a concentração de pigmentos fotossintéticos usando a seguinte equação:
Entre eles, Chl a, Chl b, Chl T e Car representam clorofila a, clorofila b, clorofila total e carotenoides, respectivamente. Os resultados são apresentados em mg/ml de planta.
Açúcares redutores foram medidos usando o método Somogy19. Para fazer isso, 0,02 g de brotos de plantas são moídos em um pilão de porcelana com 10 ml de água destilada e despejados em um pequeno copo. Aqueça o copo até ferver e então filtre o conteúdo usando papel de filtro Whatman nº 1 para obter um extrato vegetal. Transfira 2 ml de cada extrato para um tubo de ensaio e adicione 2 ml de solução de sulfato de cobre. Cubra o tubo de ensaio com algodão e aqueça em banho-maria a 100 °C por 20 minutos. Nesta fase, Cu2+ é convertido em Cu2O pela redução do monossacarídeo aldeído e uma cor salmão (terracota) é visível no fundo do tubo de ensaio. Após o tubo de ensaio esfriar, adicione 2 ml de ácido fosfomolíbdico e uma cor azul aparecerá. Agite o tubo vigorosamente até que a cor esteja uniformemente distribuída por todo o tubo. Leia a absorbância da solução a 600 nm usando um espectrofotômetro.
Calcular a concentração de açúcares redutores usando a curva padrão. A concentração de carboidratos solúveis foi determinada pelo método de Fales20. Para isso, 0,1 g de brotos foi misturado com 2,5 ml de etanol a 80% a 90 °C por 60 min (duas etapas de 30 min cada) para extrair carboidratos solúveis. O extrato é então filtrado e o álcool é evaporado. O precipitado resultante é dissolvido em 2,5 ml de água destilada. Despeje 200 ml de cada amostra em um tubo de ensaio e adicione 5 ml de indicador de antrona. A mistura foi colocada em banho-maria a 90 °C por 17 min e, após resfriamento, sua absorbância foi determinada em 625 nm.
O experimento foi um experimento fatorial baseado em um delineamento inteiramente casualizado com quatro repetições. O procedimento PROC UNIVARIATE é usado para examinar a normalidade das distribuições de dados antes da análise de variância. A análise estatística começou com uma análise estatística descritiva para entender a qualidade dos dados brutos coletados. Os cálculos são projetados para simplificar e compactar grandes conjuntos de dados para torná-los mais fáceis de interpretar. Posteriormente, análises mais complexas foram realizadas. O teste de Duncan foi realizado usando o software SPSS (versão 24; IBM Corporation, Armonk, NY, EUA) para calcular quadrados médios e erros experimentais para determinar diferenças entre conjuntos de dados. O teste múltiplo de Duncan (DMRT) foi usado para identificar diferenças entre médias em um nível de significância de (0,05 ≤ p). O coeficiente de correlação de Pearson (r) foi calculado usando o software SPSS (versão 26; IBM Corp., Armonk, NY, EUA) para avaliar a correlação entre diferentes pares de parâmetros. Além disso, foi realizada uma análise de regressão linear utilizando o software SPSS (v.26) para prever os valores das variáveis do primeiro ano com base nos valores das variáveis do segundo ano. Por outro lado, foi realizada uma análise de regressão passo a passo com p < 0,01 para identificar as características que influenciam criticamente as folhas de Schefflera anã. A análise de trilha foi conduzida para determinar os efeitos diretos e indiretos de cada atributo no modelo (com base nas características que melhor explicam a variação). Todos os cálculos acima (normalidade da distribuição dos dados, coeficiente de correlação simples, regressão passo a passo e análise de trilha) foram realizados utilizando o software SPSS V.26.
As amostras de plantas cultivadas selecionadas estavam de acordo com as diretrizes institucionais, nacionais e internacionais relevantes e com a legislação interna do Irã.
A Tabela 1 mostra estatísticas descritivas de média, desvio padrão, mínimo, máximo, amplitude e coeficiente de variação fenotípico (CV) para várias características. Entre essas estatísticas, o CV permite a comparação de atributos porque é adimensional. Açúcares redutores (40,39%), peso seco da raiz (37,32%), peso fresco da raiz (37,30%), razão açúcar/açúcar (30,20%) e volume da raiz (30%) são os mais altos. e conteúdo de clorofila (9,88%). ) e área foliar têm o maior índice (11,77%) e têm o menor valor de CV. A Tabela 1 mostra que o peso úmido total tem a maior amplitude. No entanto, essa característica não tem o maior CV. Portanto, métricas adimensionais como CV devem ser usadas para comparar mudanças de atributos. Um CV alto indica uma grande diferença entre tratamentos para essa característica. Os resultados deste experimento mostraram grandes diferenças entre tratamentos com baixo teor de açúcar nas características de peso seco da raiz, peso fresco da raiz, razão carboidrato/açúcar e volume da raiz.
Os resultados da ANOVA mostraram que, em comparação ao controle, a pulverização foliar com ácido giberélico e benziladenina teve efeito significativo na altura da planta, número de folhas, área foliar, volume da raiz, comprimento da raiz, índice de clorofila, peso fresco e peso seco.
A comparação dos valores médios mostrou que os reguladores de crescimento vegetal tiveram um efeito significativo na altura da planta e no número de folhas. Os tratamentos mais eficazes foram o ácido giberélico na concentração de 200 mg/l e o ácido giberélico + benziladenina na concentração de 200 mg/l. Em comparação com o controle, a altura da planta e o número de folhas aumentaram 32,92 vezes e 62,76 vezes, respectivamente (Tabela 2).
A área foliar aumentou significativamente em todas as variantes em comparação com o controle, com o aumento máximo observado na dose de 200 mg/l para ácido giberélico, atingindo 89,19 cm². Os resultados mostraram que a área foliar aumentou significativamente com o aumento da concentração do regulador de crescimento (Tabela 2).
Todos os tratamentos aumentaram significativamente o volume e o comprimento da raiz em comparação ao controle. A combinação de ácido giberélico + benziladenina apresentou o maior efeito, aumentando o volume e o comprimento da raiz pela metade em comparação ao controle (Tabela 2).
Os maiores valores de diâmetro do caule e comprimento do entrenó foram observados nos tratamentos controle e ácido giberélico + benziladenina 200 mg/l, respectivamente.
O índice de clorofila aumentou em todas as variantes em comparação com o controle. O maior valor dessa característica foi observado quando tratada com ácido giberélico + benziladenina 200 mg/l, que foi 30,21% maior que o controle (Tabela 2).
Os resultados mostraram que o tratamento resultou em diferenças significativas no conteúdo de pigmentos, redução de açúcares e carboidratos solúveis.
O tratamento com ácido giberélico + benziladenina resultou no teor máximo de pigmentos fotossintéticos. Este sinal foi significativamente maior em todas as variantes do que no controle.
Os resultados mostraram que todos os tratamentos foram capazes de aumentar o teor de clorofila da Schefflera anã. No entanto, o maior valor dessa característica foi observado no tratamento com ácido giberélico + benziladenina, que foi 36,95% superior ao controle (Tabela 3).
Os resultados para clorofila b foram completamente semelhantes aos resultados para clorofila a, a única diferença foi o aumento no conteúdo de clorofila b, que foi 67,15% maior que no controle (Tabela 3).
O tratamento resultou em um aumento significativo na clorofila total em comparação ao controle. O tratamento com ácido giberélico 200 mg/l + benziladenina 100 mg/l levou ao maior valor dessa característica, sendo 50% maior que o controle (Tabela 3). De acordo com os resultados, o controle e o tratamento com benziladenina na dose de 100 mg/l levaram aos maiores índices dessa característica. Liriodendron tulipifera apresenta o maior valor de carotenoides (Tabela 3).
Os resultados mostraram que quando tratado com ácido giberélico na concentração de 200 mg/L, o teor de clorofila a aumentou significativamente para clorofila b (Fig. 1).
Efeito do ácido giberélico e da benziladenina nas proporções a/b de Schefflera anã. (GA3: ácido giberélico e BA: benziladenina). As mesmas letras em cada figura indicam que a diferença não é significativa (P < 0,01).
O efeito de cada tratamento sobre o peso fresco e seco da madeira de Schefflera anã foi significativamente maior do que o do controle. Ácido giberélico + benziladenina a 200 mg/L foi o tratamento mais eficaz, aumentando o peso fresco em 138,45% em comparação ao controle. Em comparação ao controle, todos os tratamentos, exceto 100 mg/L de benziladenina, aumentaram significativamente o peso seco da planta, e 200 mg/L de ácido giberélico + benziladenina resultou no maior valor para essa característica (Tabela 4).
A maioria das variantes diferiu significativamente do controle neste aspecto, com os maiores valores pertencentes a 100 e 200 mg/l de benziladenina e 200 mg/l de ácido giberélico + benziladenina (Fig. 2).
Influência do ácido giberélico e da benziladenina na proporção de carboidratos solúveis e açúcares redutores em Schefflera anã. (GA3: ácido giberélico e BA: benziladenina). As mesmas letras em cada figura indicam que não há diferença significativa (P < 0,01).
A análise de regressão passo a passo foi realizada para determinar os atributos reais e compreender melhor a relação entre as variáveis independentes e o número de folhas em Liriodendron tulipifera. O volume da raiz foi a primeira variável inserida no modelo, explicando 44% da variação. A próxima variável foi o peso fresco da raiz, e essas duas variáveis explicaram 63% da variação no número de folhas (Tabela 5).
A análise de trilha foi realizada para melhor interpretar a regressão stepwise (Tabela 6 e Figura 3). O maior efeito positivo no número de folhas foi associado à massa de raiz fresca (0,43), que foi positivamente correlacionada com o número de folhas (0,47). Isso indica que essa característica afeta diretamente a produtividade, enquanto seu efeito indireto por meio de outras características é insignificante, e que essa característica pode ser usada como critério de seleção em programas de melhoramento para schefflera anã. O efeito direto do volume da raiz foi negativo (-0,67). A influência dessa característica no número de folhas é direta, a influência indireta é insignificante. Isso indica que quanto maior o volume da raiz, menor o número de folhas.
A Figura 4 mostra as mudanças na regressão linear do volume da raiz e dos açúcares redutores. De acordo com o coeficiente de regressão, cada mudança unitária no comprimento da raiz e nos carboidratos solúveis significa que o volume da raiz e os açúcares redutores mudam em 0,6019 e 0,311 unidades.
O coeficiente de correlação de Pearson das características de crescimento é mostrado na Figura 5. Os resultados mostraram que o número de folhas e a altura da planta (0,379*) apresentaram a maior correlação positiva e significância.
Mapa de calor das relações entre variáveis nos coeficientes de correlação da taxa de crescimento. # Eixo Y: 1-Índice Ch., 2-Internódio, 3-IAF, 4-N de folhas, 5-Altura das pernas, 6-Diâmetro do caule. # Ao longo do eixo X: A – índice H., B – distância entre nós, C – LAY, D – N. da folha, E – altura da perna da calça, F – diâmetro do caule.
O coeficiente de correlação de Pearson para atributos relacionados ao peso úmido é mostrado na Figura 6. Os resultados mostram a relação entre o peso úmido da folha e o peso seco da parte aérea (0,834**), peso seco total (0,913**) e peso seco da raiz (0,562*). A massa seca total tem a maior e mais significativa correlação positiva com a massa seca da parte aérea (0,790**) e a massa seca da raiz (0,741**).
Mapa de calor das relações entre as variáveis do coeficiente de correlação do peso fresco. # Eixo Y: 1 – peso das folhas frescas, 2 – peso dos brotos frescos, 3 – peso das raízes frescas, 4 – peso total das folhas frescas. # O eixo X representa: A – peso das folhas frescas, B – peso dos brotos frescos, CW – peso das raízes frescas, D – peso fresco total.
Os coeficientes de correlação de Pearson para atributos relacionados ao peso seco são mostrados na Figura 7. Os resultados mostram que o peso seco das folhas, peso seco dos brotos (0,848**) e peso seco total (0,947**), peso seco dos brotos (0,854**) e massa seca total (0,781**) apresentam os maiores valores de correlação positiva e correlação significativa.
Mapa de calor das relações entre as variáveis do coeficiente de correlação do peso seco. # O eixo Y representa: 1-peso seco da folha, 2-peso seco da gema, 3-peso seco da raiz, 4-peso seco total. # Eixo X: A-peso seco da folha, B-peso seco da gema, CW-peso seco da raiz, D-peso seco total.
O coeficiente de correlação de Pearson das propriedades dos pigmentos é mostrado na Figura 8. Os resultados mostram que clorofila a e clorofila b (0,716**), clorofila total (0,968**) e pigmentos totais (0,954**); clorofila b e clorofila total (0,868**) e pigmentos totais (0,851**); a clorofila total tem a maior correlação positiva e significativa com os pigmentos totais (0,984**).
Mapa de calor das relações entre as variáveis do coeficiente de correlação da clorofila. # Eixos Y: 1- Canal a, 2- Canal b, 3- relação a/b, 4 canais. Total, 5-carotenoides, 6-rendimento de pigmentos. # Eixos X: A-Ch. aB-Ch. b, C- relação a/b, D-Ch. Conteúdo total, E-carotenoides, F-rendimento de pigmentos.
Schefflera anã é uma planta doméstica popular em todo o mundo, e seu crescimento e desenvolvimento estão recebendo muita atenção atualmente. O uso de reguladores de crescimento de plantas resultou em diferenças significativas, com todos os tratamentos aumentando a altura da planta em comparação ao controle. Embora a altura da planta seja geralmente controlada geneticamente, pesquisas mostram que a aplicação de reguladores de crescimento de plantas pode aumentar ou diminuir a altura da planta. A altura da planta e o número de folhas tratados com ácido giberélico + benziladenina 200 mg/L foram os mais altos, atingindo 109 cm e 38,25, respectivamente. Consistente com estudos anteriores (Salehi Sardoei et al.52) e Spathiphyllum23, aumentos semelhantes na altura da planta devido ao tratamento com ácido giberélico foram observados em calêndulas em vasos, albus alba21, hemerocallis22, hemerocallis, agarwood e lírios da paz.
O ácido giberélico (AG) desempenha um papel importante em vários processos fisiológicos das plantas. Eles estimulam a divisão celular, o alongamento celular, o alongamento do caule e o aumento do tamanho24. O AG induz a divisão celular e o alongamento nos ápices dos brotos e meristemas25. As alterações foliares também incluem diminuição da espessura do caule, tamanho menor da folha e uma coloração verde mais brilhante26. Estudos utilizando fatores inibitórios ou estimulatórios demonstraram que íons de cálcio de fontes internas atuam como segundos mensageiros na via de sinalização da giberelina na corola do sorgo27. O AH aumenta o comprimento da planta estimulando a síntese de enzimas que causam o relaxamento da parede celular, como XET ou XTH, expansinas e PME28. Isso faz com que as células aumentem de tamanho à medida que a parede celular relaxa e a água entra na célula29. A aplicação de AG7, AG3 e AG4 pode aumentar o alongamento do caule30,31. O ácido giberélico causa alongamento do caule em plantas anãs e, em plantas em roseta, retarda o crescimento foliar e o alongamento dos internódios32. No entanto, antes da fase reprodutiva, o comprimento do caule aumenta para 4 a 5 vezes sua altura original33. O processo de biossíntese de AG em plantas é resumido na Figura 9.
Biossíntese de GA em plantas e níveis de GA bioativo endógeno, representação esquemática das plantas (à direita) e da biossíntese de GA (à esquerda). As setas são codificadas por cores para corresponder à forma de HA indicada ao longo da via biossintética; setas vermelhas indicam níveis reduzidos de GC devido à localização em órgãos da planta, e setas pretas indicam níveis aumentados de GC. Em muitas plantas, como arroz e melancia, o teor de GA é maior na base ou na parte inferior da folha30. Além disso, alguns relatos indicam que o teor de GA bioativo diminui à medida que as folhas se alongam a partir da base34. Os níveis exatos de giberelinas nesses casos são desconhecidos.
Os reguladores de crescimento vegetal também influenciam significativamente o número e a área foliar. Os resultados mostraram que o aumento da concentração de regulador de crescimento vegetal resultou em um aumento significativo na área e no número de folhas. Foi relatado que a benziladenina aumenta a produção de folhas de calla15. De acordo com os resultados deste estudo, todos os tratamentos melhoraram a área e o número de folhas. O ácido giberélico + benziladenina foi o tratamento mais eficaz e resultou no maior número e área foliar. Ao cultivar Schefflera anã em ambientes internos, pode haver um aumento perceptível no número de folhas.
O tratamento com GA3 aumentou o comprimento do internódio em comparação com a benziladenina (BA) ou nenhum tratamento hormonal. Este resultado é lógico, dado o papel do GA na promoção do crescimento7. O crescimento do caule também mostrou resultados semelhantes. O ácido giberélico aumentou o comprimento do caule, mas diminuiu seu diâmetro. No entanto, a aplicação combinada de BA e GA3 aumentou significativamente o comprimento do caule. Este aumento foi maior em comparação com plantas tratadas com BA ou sem o hormônio. Embora o ácido giberélico e as citocininas (CK) geralmente promovam o crescimento das plantas, em alguns casos eles têm efeitos opostos em diferentes processos35. Por exemplo, uma interação negativa foi observada no aumento do comprimento do hipocótilo em plantas tratadas com GA e BA36. Por outro lado, o BA aumentou significativamente o volume da raiz (Tabela 1). O aumento do volume da raiz devido ao BA exógeno foi relatado em muitas plantas (por exemplo, espécies de Dendrobium e Orchid)37,38.
Todos os tratamentos hormonais aumentaram o número de novas folhas. O aumento natural da área foliar e do comprimento do caule por meio de tratamentos combinados é comercialmente desejável. O número de novas folhas é um importante indicador do crescimento vegetativo. O uso de hormônios exógenos não foi utilizado na produção comercial de Liriodendron tulipifera. No entanto, os efeitos promotores de crescimento de GA e CK, aplicados em equilíbrio, podem fornecer novos insights para melhorar o cultivo desta planta. Notavelmente, o efeito sinérgico do tratamento com BA + GA3 foi maior do que o de GA ou BA administrados isoladamente. O ácido giberélico aumenta o número de novas folhas. À medida que novas folhas se desenvolvem, aumentar o número de novas folhas pode limitar o crescimento foliar39. Foi relatado que o GA melhora o transporte de sacarose dos sumidouros para os órgãos de origem40,41. Além disso, a aplicação exógena de GA em plantas perenes pode promover o crescimento de órgãos vegetativos, como folhas e raízes, impedindo assim a transição do crescimento vegetativo para o crescimento reprodutivo42.
O efeito do ácido graxo (GA) no aumento da matéria seca da planta pode ser explicado pelo aumento da fotossíntese devido ao aumento da área foliar43. Foi relatado que o GA causa um aumento na área foliar do milho34. Os resultados mostraram que o aumento da concentração de BA para 200 mg/L pode aumentar o comprimento e o número de ramos secundários e o volume da raiz. O ácido giberélico influencia processos celulares, como a estimulação da divisão e do alongamento celular, melhorando assim o crescimento vegetativo43. Além disso, o HA expande a parede celular ao hidrolisar o amido em açúcar, reduzindo assim o potencial hídrico da célula, fazendo com que a água entre na célula e, por fim, levando ao alongamento celular44.
Horário da postagem: 11/06/2024