O uso generalizado de pesticidas sintéticos tem causado muitos problemas, incluindo o surgimento de organismos resistentes, degradação ambiental e danos à saúde humana. Portanto, novos microrganismospesticidasque sejam seguros para a saúde humana e o meio ambiente são urgentemente necessários. Neste estudo, o biossurfactante ramnolipídeo produzido por Enterobacter cloacae SJ2 foi usado para avaliar a toxicidade para larvas de mosquito (Culex quinquefasciatus) e cupim (Odontotermes obesus). Os resultados mostraram que houve uma taxa de mortalidade dependente da dose entre os tratamentos. O valor de CL50 (concentração letal de 50%) em 48 horas para biossurfactantes de larvas de cupins e mosquitos foi determinado usando um método de ajuste de curva de regressão não linear. Os resultados mostraram que os valores de CL50 de 48 horas (intervalo de confiança de 95%) da atividade larvicida e anticupim do biossurfactante foram de 26,49 mg/L (intervalo de 25,40 a 27,57) e 33,43 mg/L (intervalo de 31,09 a 35,68), respectivamente. De acordo com o exame histopatológico, o tratamento com biossurfactantes causou danos graves aos tecidos organelos de larvas e cupins. Os resultados deste estudo indicam que o biossurfactante microbiano produzido por Enterobacter cloacae SJ2 é uma ferramenta excelente e potencialmente eficaz para o controle de Cx. quinquefasciatus e O. obesus.
Os países tropicais sofrem com um grande número de doenças transmitidas por mosquitos1. A relevância das doenças transmitidas por mosquitos é ampla. Mais de 400.000 pessoas morrem de malária a cada ano, e algumas grandes cidades estão enfrentando epidemias de doenças graves, como dengue, febre amarela, chikungunya e zika.2 As doenças transmitidas por vetores estão associadas a uma em cada seis infecções no mundo, com os mosquitos causando os casos mais significativos3,4. Culex, Anopheles e Aedes são os três gêneros de mosquitos mais comumente associados à transmissão de doenças5. A prevalência da dengue, uma infecção transmitida pelo mosquito Aedes aegypti, aumentou na última década e representa uma ameaça significativa à saúde pública4,7,8. De acordo com a Organização Mundial da Saúde (OMS), mais de 40% da população mundial está em risco de dengue, com 50 a 100 milhões de novos casos ocorrendo anualmente em mais de 100 países9,10,11. A dengue tornou-se um grande problema de saúde pública, visto que sua incidência aumentou em todo o mundo12,13,14. O Anopheles gambiae, comumente conhecido como mosquito Anopheles africano, é o vetor mais importante da malária humana em regiões tropicais e subtropicais15. O vírus do Nilo Ocidental, a encefalite de St. Louis, a encefalite japonesa e infecções virais em cavalos e pássaros são transmitidas por mosquitos Culex, frequentemente chamados de mosquitos domésticos comuns. Além disso, eles também são portadores de doenças bacterianas e parasitárias16. Existem mais de 3.000 espécies de cupins no mundo, e eles existem há mais de 150 milhões de anos17. A maioria das pragas vive no solo e se alimenta de madeira e produtos de madeira que contêm celulose. O cupim indiano Odontotermes obesus é uma praga importante que causa danos severos a importantes plantações e árvores de plantações18. Em áreas agrícolas, infestações de cupins em vários estágios podem causar enormes danos econômicos a várias plantações, espécies de árvores e materiais de construção. Os cupins também podem causar problemas de saúde humana19.
A questão da resistência de microrganismos e pragas nos campos farmacêutico e agrícola atuais é complexa20,21. Portanto, ambas as empresas devem buscar novos antimicrobianos e biopesticidas seguros com boa relação custo-benefício. Pesticidas sintéticos já estão disponíveis e demonstraram ser infecciosos e repelir insetos benéficos não-alvo22. Nos últimos anos, a pesquisa sobre biossurfactantes se expandiu devido à sua aplicação em diversos setores. Os biossurfactantes são muito úteis e vitais na agricultura, remediação de solos, extração de petróleo, remoção de bactérias e insetos e processamento de alimentos23,24. Biossurfactantes ou surfactantes microbianos são produtos químicos biossurfactantes produzidos por microrganismos como bactérias, leveduras e fungos em habitats costeiros e áreas contaminadas por petróleo25,26. Surfactantes e biossurfactantes derivados de produtos químicos são dois tipos obtidos diretamente do ambiente natural27. Vários biossurfactantes são obtidos de habitats marinhos28,29. Portanto, os cientistas estão buscando novas tecnologias para a produção de biossurfactantes com base em bactérias naturais30,31. Avanços nessas pesquisas demonstram a importância desses compostos biológicos para a proteção ambiental32. Bacillus, Pseudomonas, Rhodococcus, Alcaligenes, Corynebacterium e esses gêneros bacterianos são representantes bem estudados23,33.
Existem muitos tipos de biossurfactantes com uma ampla gama de aplicações34. Uma vantagem significativa desses compostos é que alguns deles têm atividade antibacteriana, larvicida e inseticida. Isso significa que eles podem ser usados nas indústrias agrícola, química, farmacêutica e cosmética35,36,37,38. Como os biossurfactantes são geralmente biodegradáveis e ambientalmente benéficos, eles são usados em programas de manejo integrado de pragas para proteger as plantações39. Assim, o conhecimento básico foi obtido sobre a atividade larvicida e antitérmita de biossurfactantes microbianos produzidos por Enterobacter cloacae SJ2. Examinamos a mortalidade e as alterações histológicas quando expostos a diferentes concentrações de biossurfactantes ramnolipídeos. Além disso, avaliamos o programa de computador Quantitative Structure-Activity (QSAR), Ecological Structure-Activity (ECOSAR), amplamente utilizado para determinar a toxicidade aguda para microalgas, dáfnias e peixes.
Neste estudo, a atividade anticupim (toxicidade) de biossurfactantes purificados em várias concentrações, variando de 30 a 50 mg/ml (em intervalos de 5 mg/ml), foi testada contra cupins indianos, O. obesus e a quarta espécie. Larvas de ínstar Cx. Larvas de mosquitos quinquefasciatus. Concentrações de CL50 do biossurfactante ao longo de 48 horas contra O. obesus e Cx. C. solanacearum. As larvas do mosquito foram identificadas usando um método de ajuste de curva de regressão não linear. Os resultados mostraram que a mortalidade de cupins aumentou com o aumento da concentração do biossurfactante. Os resultados mostraram que o biossurfactante apresentou atividade larvicida (Figura 1) e atividade anti-cupim (Figura 2), com valores de CL50 de 48 horas (IC 95%) de 26,49 mg/L (25,40 a 27,57) e 33,43 mg/l (Fig. 31,09 a 35,68), respectivamente (Tabela 1). Em termos de toxicidade aguda (48 horas), o biossurfactante é classificado como “nocivo” aos organismos testados. O biossurfactante produzido neste estudo apresentou excelente atividade larvicida com mortalidade de 100% dentro de 24-48 horas de exposição.
Calcule o valor de CL50 para a atividade larvicida. Ajuste da curva de regressão não linear (linha contínua) e intervalo de confiança de 95% (área sombreada) para mortalidade relativa (%).
Calcule o valor de CL50 para a atividade anticupim. Ajuste da curva de regressão não linear (linha contínua) e intervalo de confiança de 95% (área sombreada) para mortalidade relativa (%).
Ao final do experimento, alterações morfológicas e anomalias foram observadas ao microscópio. Alterações morfológicas foram observadas nos grupos controle e tratado com ampliação de 40x. Como mostrado na Figura 3, o comprometimento do crescimento ocorreu na maioria das larvas tratadas com biossurfactantes. A Figura 3a mostra uma larva Cx. quinquefasciatus normal, enquanto a Figura 3b mostra uma larva Cx. anômala. Causa cinco larvas de nematoides.
Efeito de doses subletais (CL50) de biossurfactantes no desenvolvimento de larvas de Culex quinquefasciatus. Imagem de microscopia óptica (a) de um Cx normal com ampliação de 40x. quinquefasciatus (b) Cx anormal. Causa cinco larvas de nematoides.
No presente estudo, o exame histológico das larvas tratadas (Fig. 4) e dos cupins (Fig. 5) revelou diversas anormalidades, incluindo redução da área abdominal e danos aos músculos, camadas epiteliais e pele do intestino médio. A histologia revelou o mecanismo de atividade inibitória do biossurfactante utilizado neste estudo.
Histopatologia de larvas Cx de 4º ínstar normais, não tratadas. Larvas de quinquefasciatus (controle: (a,b)) e tratadas com biossurfactante (tratamento: (c,d)). As setas indicam o epitélio intestinal tratado (epi), núcleo (n) e músculo (mu). Barra = 50 µm.
Histopatologia de O. obesus normal não tratado (controle: (a,b)) e tratado com biossurfactante (tratamento: (c,d)). As setas indicam o epitélio intestinal (epi) e o músculo (mu), respectivamente. Barra = 50 µm.
Neste estudo, o ECOSAR foi utilizado para prever a toxicidade aguda de produtos biossurfactantes ramnolipídicos para produtores primários (algas verdes), consumidores primários (pulgas d'água) e consumidores secundários (peixes). Este programa utiliza modelos quantitativos sofisticados de estrutura-atividade de compostos para avaliar a toxicidade com base na estrutura molecular. O modelo utiliza software de estrutura-atividade (SAR) para calcular a toxicidade aguda e a longo prazo de substâncias para espécies aquáticas. Especificamente, a Tabela 2 resume as concentrações letais médias (CL50) e as concentrações efetivas médias (CE50) estimadas para diversas espécies. A toxicidade suspeita foi categorizada em quatro níveis utilizando o Sistema Globalmente Harmonizado de Classificação e Rotulagem de Produtos Químicos (Tabela 3).
Controle de doenças transmitidas por vetores, especialmente cepas de mosquitos e mosquitos Aedes. Egípcios, agora trabalho difícil 40,41,42,43,44,45,46. Embora alguns pesticidas quimicamente disponíveis, como piretróides e organofosforados, sejam de certa forma benéficos, eles representam riscos significativos à saúde humana, incluindo diabetes, distúrbios reprodutivos, distúrbios neurológicos, câncer e doenças respiratórias. Além disso, com o tempo, esses insetos podem se tornar resistentes a eles 13,43,48. Assim, medidas de controle biológico eficazes e ecologicamente corretas se tornarão um método mais popular de controle de mosquitos 49,50. Benelli 51 sugeriu que o controle precoce de mosquitos vetores seria mais eficaz em áreas urbanas, mas não recomendou o uso de larvicidas em áreas rurais 52. Tom et al 53 também sugeriram que controlar mosquitos em seus estágios imaturos seria uma estratégia segura e simples, pois eles são mais sensíveis aos agentes de controle 54 .
A produção de biossurfactantes por uma cepa potente (Enterobacter cloacae SJ2) demonstrou eficácia consistente e promissora. Nosso estudo anterior relatou que Enterobacter cloacae SJ2 otimiza a produção de biossurfactantes usando parâmetros físico-químicos26. De acordo com seu estudo, as condições ótimas para a produção de biossurfactantes por um potencial isolado de E. cloacae foram incubação por 36 horas, agitação a 150 rpm, pH 7,5, 37 °C, salinidade 1 ppt, 2% de glicose como fonte de carbono, 1% de levedura. O extrato foi usado como fonte de nitrogênio para obter 2,61 g/L de biossurfactante. Além disso, os biossurfactantes foram caracterizados usando TLC, FTIR e MALDI-TOF-MS. Isso confirmou que o ramnolipídeo é um biossurfactante. Biossurfactantes glicolipídicos são a classe mais intensamente estudada de outros tipos de biossurfactantes55. Eles consistem em partes de carboidratos e lipídios, principalmente cadeias de ácidos graxos. Entre os glicolipídios, os principais representantes são o ramnolipídio e o soforolipídio56. Os ramnolipídios contêm duas frações de ramnose ligadas ao ácido mono ou di-β-hidroxidecanóico 57 . O uso de ramnolipídios nas indústrias médica e farmacêutica está bem estabelecido 58 , além de seu uso recente como pesticidas 59 .
A interação do biossurfactante com a região hidrofóbica do sifão respiratório permite que a água passe por sua cavidade estomática, aumentando assim o contato das larvas com o ambiente aquático. A presença de biossurfactantes também afeta a traqueia, cujo comprimento é próximo à superfície, o que facilita o rastejamento das larvas até a superfície e a respiração. Como resultado, a tensão superficial da água diminui. Como as larvas não conseguem se fixar na superfície da água, elas caem no fundo do tanque, interrompendo a pressão hidrostática, resultando em gasto excessivo de energia e morte por afogamento38,60. Resultados semelhantes foram obtidos por Ghribi61, onde um biossurfactante produzido por Bacillus subtilis exibiu atividade larvicida contra Ephestia kuehniella. Das e Mukherjee23 também avaliaram a atividade larvicida de Cx. Das e Mukherjee23 também avaliaram o efeito de lipopeptídeos cíclicos em larvas de quinquefasciatus.
Os resultados deste estudo referem-se à atividade larvicida de biossurfactantes ramnolipídicos contra Cx. A eliminação de mosquitos quinquefasciatus é consistente com resultados publicados anteriormente. Por exemplo, são utilizados biossurfactantes à base de surfactina produzidos por várias bactérias do gênero Bacillus. e Pseudomonas spp. Alguns relatórios iniciais64,65,66 relataram atividade de eliminação de larvas de biossurfactantes lipopeptídicos de Bacillus subtilis23. Deepali et al.63 descobriram que o biossurfactante ramnolipídico isolado de Stenotropomonas maltophilia tinha potente atividade larvicida a uma concentração de 10 mg/L. Silva et al.67 relataram a atividade larvicida do biossurfactante ramnolipídico contra Ae a uma concentração de 1 g/L. Aedes aegypti. Kanakdande et al. 68 relataram que biossurfactantes lipopeptídicos produzidos por Bacillus subtilis causaram mortalidade geral em larvas de Culex e cupins com a fração lipofílica de Eucalyptus. Da mesma forma, Masendra et al. 69 relataram mortalidade de 61,7% em formigas operárias (Cryptotermes cynocephalus Light.) nas frações lipofílicas de n-hexano e EtOAc do extrato bruto de E.
Parthipan et al. 70 relataram o uso inseticida de biossurfactantes lipopeptídicos produzidos por Bacillus subtilis A1 e Pseudomonas stutzeri NA3 contra Anopheles Stephensi, um vetor do parasita da malária Plasmodium. Eles observaram que larvas e pupas sobreviveram por mais tempo, tiveram períodos de oviposição mais curtos, foram estéreis e tiveram menor expectativa de vida quando tratadas com diferentes concentrações de biossurfactantes. Os valores de CL50 observados do biossurfactante A1 de B. subtilis foram 3,58, 4,92, 5,37, 7,10 e 7,99 mg/L para diferentes estados larvais (ou seja, larvas I, II, III, IV e estágio de pupa), respectivamente. Em comparação, os biossurfactantes para os estágios larvais I-IV e pupais de Pseudomonas stutzeri NA3 foram de 2,61, 3,68, 4,48, 5,55 e 6,99 mg/L, respectivamente. Acredita-se que o atraso na fenologia das larvas e pupas sobreviventes seja resultado de distúrbios fisiológicos e metabólicos significativos causados por tratamentos com inseticidas71.
A cepa CCMA 0358 de Wickerhamomyces anomalus produz um biossurfactante com 100% de atividade larvicida contra mosquitos Aedes. O intervalo de 24 horas 38 foi maior do que o relatado por Silva et al. Um biossurfactante produzido a partir de Pseudomonas aeruginosa usando óleo de girassol como fonte de carbono demonstrou matar 100% das larvas em 48 horas 67 . Abinaya et al. 72 e Pradhan et al. 73 também demonstraram os efeitos larvicidas ou inseticidas de surfactantes produzidos por vários isolados do gênero Bacillus. Um estudo publicado anteriormente por Senthil-Nathan et al. descobriu que 100% das larvas de mosquito expostas a lagoas de plantas provavelmente morreriam. 74
Avaliar os efeitos subletais de inseticidas na biologia de insetos é crítico para programas de manejo integrado de pragas porque doses/concentrações subletais não matam insetos, mas podem reduzir populações de insetos em gerações futuras ao interromper características biológicas10. Siqueira et al 75 observaram atividade larvicida completa (100% de mortalidade) de biossurfactante ramnolipídeo (300 mg/ml) quando testado em várias concentrações variando de 50 a 300 mg/ml. Estágio larval de cepas de Aedes aegypti. Eles analisaram os efeitos do tempo até a morte e das concentrações subletais na sobrevivência larval e na atividade natatória. Além disso, eles observaram uma diminuição na velocidade de nado após 24–48 horas de exposição a concentrações subletais de biossurfactante (por exemplo, 50 mg/mL e 100 mg/mL). Acredita-se que venenos que têm papéis subletais promissores sejam mais eficazes em causar danos múltiplos a pragas expostas76.
Observações histológicas de nossos resultados indicam que biossurfactantes produzidos por Enterobacter cloacae SJ2 alteram significativamente os tecidos de larvas de mosquito (Cx. quinquefasciatus) e cupim (O. obesus). Anomalias semelhantes foram causadas por preparações de óleo de manjericão em An. gambiae e An. arabica foram descritas por Ochola. Kamaraj et al. também descreveram as mesmas anormalidades morfológicas em An. As larvas de Stephanie foram expostas a nanopartículas de ouro. Vasantha-Srinivasan et al. também relataram que o óleo essencial de bolsa de pastor danificou severamente a câmara e as camadas epiteliais de Aedes albopictus e Aedes aegypti. Raghavendran et al relataram que larvas de mosquito foram tratadas com extrato micelial de 500 mg/ml de um fungo local Penicillium. Ae mostram dano histológico severo. aegypti e Cx. Taxa de mortalidade 80. Anteriormente, Abinaya et al. estudaram larvas de quarto ínstar de An. Stephensi e Ae. aegypti encontraram inúmeras alterações histológicas em Aedes aegypti tratados com exopolissacarídeos de B. licheniformis, incluindo ceco gástrico, atrofia muscular, danos e desorganização dos gânglios da medula nervosa72. De acordo com Raghavendran et al., após tratamento com extrato micelial de P. daleae, as células do intestino médio dos mosquitos testados (larvas de quarto ínstar) apresentaram inchaço do lúmen intestinal, diminuição do conteúdo intercelular e degeneração nuclear81. As mesmas alterações histológicas foram observadas em larvas de mosquito tratadas com extrato de folhas de equinácea, indicando o potencial inseticida dos compostos tratados50.
O uso do software ECOSAR recebeu reconhecimento internacional82. Pesquisas atuais sugerem que a toxicidade aguda dos biossurfactantes ECOSAR para microalgas (C. vulgaris), peixes e pulgas d'água (D. magna) se enquadra na categoria de "toxicidade" definida pelas Nações Unidas83. O modelo de ecotoxicidade ECOSAR utiliza SAR e QSAR para prever a toxicidade aguda e de longo prazo de substâncias e é frequentemente utilizado para prever a toxicidade de poluentes orgânicos82,84.
Paraformaldeído, tampão de fosfato de sódio (pH 7,4) e todos os outros produtos químicos usados neste estudo foram adquiridos da HiMedia Laboratories, Índia.
A produção de biossurfactante foi realizada em frascos Erlenmeyer de 500 mL contendo 200 mL de meio Bushnell Haas estéril suplementado com 1% de petróleo bruto como única fonte de carbono. Uma pré-cultura de Enterobacter cloacae SJ2 (1,4 × 104 UFC/ml) foi inoculada e cultivada em um agitador orbital a 37 °C, 200 rpm por 7 dias. Após o período de incubação, o biossurfactante foi extraído por centrifugação do meio de cultura a 3400 × g por 20 min a 4 °C e o sobrenadante resultante foi utilizado para fins de triagem. Os procedimentos de otimização e caracterização de biossurfactantes foram adotados de nosso estudo anterior26.
Larvas de Culex quinquefasciatus foram obtidas do Centro de Estudos Avançados em Biologia Marinha (CAS), Palanchipetai, Tamil Nadu (Índia). As larvas foram criadas em recipientes plásticos com água deionizada a 27 ± 2°C e fotoperíodo de 12:12 (claro:escuro). As larvas de mosquito foram alimentadas com uma solução de glicose a 10%.
Larvas de Culex quinquefasciatus foram encontradas em fossas sépticas abertas e desprotegidas. Use diretrizes de classificação padrão para identificar e cultivar larvas em laboratório85. Os ensaios larvicidas foram realizados de acordo com as recomendações da Organização Mundial da Saúde86. SH. Larvas de quarto ínstar de quinquefasciatus foram coletadas em tubos fechados em grupos de 25 ml e 50 ml com um espaço de ar de dois terços de sua capacidade. Biossurfactante (0–50 mg/ml) foi adicionado a cada tubo individualmente e armazenado a 25 °C. O tubo de controle usou apenas água destilada (50 ml). Larvas mortas foram consideradas aquelas que não mostraram sinais de natação durante o período de incubação (12–48 horas)87. Calcule a porcentagem de mortalidade larval usando a equação. (1)88.
A família Odontotermitidae inclui o cupim indiano Odontotermes obesus, encontrado em troncos apodrecidos no Campus Agrícola (Universidade Annamalai, Índia). Teste este biossurfactante (0–50 mg/ml) usando procedimentos normais para determinar se é prejudicial. Após secagem em fluxo de ar laminar por 30 min, cada tira de papel Whatman foi revestida com biossurfactante a uma concentração de 30, 40 ou 50 mg/ml. Tiras de papel pré-revestidas e não revestidas foram testadas e comparadas no centro de uma placa de Petri. Cada placa de Petri contém cerca de trinta cupins ativos O. obesus. Cupins de controle e de teste receberam papel úmido como fonte de alimento. Todas as placas foram mantidas em temperatura ambiente durante todo o período de incubação. Os cupins morreram após 12, 24, 36 e 48 horas89,90. A Equação 1 foi então usada para estimar a porcentagem de mortalidade de cupins em diferentes concentrações de biossurfactante. (2).
As amostras foram mantidas em gelo e acondicionadas em microtubos contendo 100 ml de tampão fosfato de sódio 0,1 M (pH 7,4) e enviadas ao Laboratório Central de Patologia em Aquicultura (CAPL) do Centro Rajiv Gandhi de Aquicultura (RGCA). Laboratório de Histologia, Sirkali, Distrito de Mayiladuthurai, Tamil Nadu, Índia, para análises posteriores. As amostras foram imediatamente fixadas em paraformaldeído a 4% a 37 °C por 48 horas.
Após a fase de fixação, o material foi lavado três vezes com tampão fosfato de sódio 0,1 M (pH 7,4), desidratado em etanol por etapas e embebido em resina LEICA por 7 dias. A substância foi então colocada em um molde plástico preenchido com resina e polimerizador, e então levada a uma estufa aquecida a 37 °C até que o bloco contendo a substância estivesse completamente polimerizado.
Após a polimerização, os blocos foram cortados usando um micrótomo LEICA RM2235 (Rankin Biomedical Corporation, 10.399 Enterprise Dr. Davisburg, MI 48.350, EUA) até uma espessura de 3 mm. Os cortes foram agrupados em lâminas, com seis cortes por lâmina. As lâminas foram secas à temperatura ambiente, coradas com hematoxilina por 7 minutos e lavadas em água corrente por 4 minutos. Além disso, a solução de eosina foi aplicada na pele por 5 minutos e enxaguada em água corrente por 5 minutos.
A toxicidade aguda foi prevista utilizando organismos aquáticos de diferentes níveis tropicais: CL50 de peixes de 96 horas, CL50 de D. magna de 48 horas e CE50 de algas verdes de 96 horas. A toxicidade de biossurfactantes ramnolipídicos para peixes e algas verdes foi avaliada utilizando o software ECOSAR versão 2.2 para Windows, desenvolvido pela Agência de Proteção Ambiental dos EUA. (Disponível online em https://www.epa.gov/tsca-screening-tools/ecological-struct-activity-relationships-ecosar-predictive-model).
Todos os testes de atividade larvicida e anticupins foram realizados em triplicata. A regressão não linear (log das variáveis de resposta à dose) dos dados de mortalidade de larvas e cupins foi realizada para calcular a concentração letal mediana (CL50) com intervalo de confiança de 95%, e as curvas de resposta à concentração foram geradas usando Prism® (versão 8.0, GraphPad Software Inc., EUA) 84, 91.
O presente estudo revela o potencial de biossurfactantes microbianos produzidos por Enterobacter cloacae SJ2 como agentes larvicidas e antitérmitas contra mosquitos, e este trabalho contribuirá para uma melhor compreensão dos mecanismos de ação larvicida e antitérmita. Estudos histológicos de larvas tratadas com biossurfactantes mostraram danos ao trato digestivo, intestino médio, córtex cerebral e hiperplasia de células epiteliais intestinais. Resultados: A avaliação toxicológica da atividade antitérmita e larvicida do biossurfactante ramnolipídeo produzido por Enterobacter cloacae SJ2 revelou que este isolado é um biopesticida potencial para o controle de doenças transmitidas por vetores de mosquitos (Cx quinquefasciatus) e cupins (O. obesus). Há uma necessidade de entender a toxicidade ambiental subjacente dos biossurfactantes e seus potenciais impactos ambientais. Este estudo fornece uma base científica para avaliar o risco ambiental dos biossurfactantes.
Horário da postagem: 09/04/2024